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智立中特各種細胞的培養方法

細胞培養技術是細胞生物學研究方法中重要和常用技術,通過細胞培養既可以獲得大量細胞,又可以借此研究細胞的信號轉導、細胞的合成代謝、細胞的生長增殖等。
微血管內皮細胞培養方法
方法一
步驟如下:
取體質量60-70g雄性sd大鼠
無菌條件下取出大腦
放預冷dhank′s中
剝離軟腦膜、大血管及大腦髓質
收集大腦皮質,剪碎成1mm3的小塊
移入勻漿器中勻漿,將勻漿液依次通過80目和200目尼龍網過濾
收集200目尼龍網上的微血管段。用0.12%膠原酶37℃消化20min
沖洗液沖洗2遍,離心所得沉淀用配制的內皮細胞完,全培懸浮后
接種于明膠預先包被的培養瓶中,37℃,5%co2培養箱中靜置培養
約6-7天細胞基本融合成片后,用01125%胰,蛋白酶+0102%edta消化,進行傳代
方法二
選用dmem高糖培養基
1.取5-7天大鼠心臟,用pbs洗凈血液
2.用75%乙醇浸泡30s
3.用pbs沖洗后,剪碎,用適量0.5%膠原酶在37度搖擺水浴中消化30min,加入適量0.02%胰,蛋白酶,用吸管輕輕吹打,37度水浴中消化30min。
4.分離下的細胞過200目篩網,過濾液用20%小牛血清dmem培養基混懸離心(1000轉/min,5min),未過網的棄之。
5.所得細胞懸于20%小牛血清dmem培養基,并調整細胞濃度到104-105/ml,接種于0.2%明膠預處理的培養瓶中37度培養4小時,以去除未黏附細胞,更換含50mg/l肝素、10mg/l內皮細胞生長因子的dmem完,全培養基培養。
6.每3-4天換液一次,直至長成細胞單層,選3-4代傳代內皮細胞,0.25%胰,蛋白酶消化備用。
小鼠心肌細胞培養方法
1.制備心肌細胞用出生一天的乳鼠最,好。
2.制備心肌細胞用試驗方法書上的方法,取心尖部用pps洗清,要剪粹0.1mm,注意器械無菌。
3.培養基有進口的dmem,用20%的胎牛血清,加雙抗,注意操作的無菌。
4.用分次消化法,在此37度的搖床中進行分次消化法,消化時間要把握好,不然大過,吹打要把握好。
5.消化好后直接接種于96孔板中進行試驗備用,離心的速度不能大快,否則心肌細胞就會有很多死細胞。
6.我用二次差速的方法來純化心肌細胞,每次1.5小時,差速后的細胞種在96孔板中并加上一定量的殺非心肌細胞的物質,三天,經研究加五天也行對細胞沒有很多影響。
7.心肌細胞有大部分的心肌纖維細胞和心肌細胞,而心肌細胞又分為m心肌細胞和f心肌細胞,我們用于研究用的心肌細胞最,好用m心肌細胞,因為m心肌細胞跳動很明顯。
8.要很好的把握好試驗的時間
心肌細胞培養方法詳述配液:hanks液、低糖dmem液、高糖dmem液、胰,酶消化液、雙抗液、碳,酸氫鈉液、鹽酸液。
取鼠:鼠盆用棉鋪好,取鼠。
準備:事先檢查顯微鏡、磁力攪拌器及離心機是否好用,提前三小時把胎牛血清、胰,酶、抗生素拿出來化開。其余未凍藥品也提前20分鐘拿出來緩和一下。新潔爾滅(0.1%)泡紗布(用10ml5%的新潔爾滅加水至500ml即得),消毒地面(1:500的84液)。
用酒精棉球擦拭臺面后把物品擺放好,開紫外線燈照30分鐘后開鼓風機吹至實驗結束。
物品:白大衣、飯盒、小剪子、小鑷子(4套)(一套剪皮膚、一套開胸取心,一套剔除心緣纖維組織,一套剪碎心臟)、瓶皿(2套)[兩個小圓培養皿,培養皿內加dmem液,先后裝取出的心和剔出纖維組織后的心][一個小燒杯裝碘酒和酒精棉球]、250ml燒杯3個[一個用于水浴,事先加好水,最,好是一或二蒸][一個裝0.1%新潔爾滅150ml左右,消毒小鼠]、500ml燒杯1個,用作廢液缸、50ml燒杯3個(剪碎心肌組織,最后配液)、三角燒杯(50ml)+小轉子(小轉子,酒精擦,雙蒸水沖后,再把酒精徹,底沖掉后用三角燒杯高壓);離心管及帽(12-14個),兩個試管吸管(5~8個)大鑷子(兩把,持物,例夾棉球等)
臺面:磁力攪拌器、紗布(事先用于托盤裝0.1%新潔爾滅浸泡)、試管架、泡沫塑料板、五個針頭(不用消毒)75%酒精棉球及碘酒(消,毒,棉球,泡酒精、碘酒)大鑷子兩把(一把夾棉球,一把取鼠)、3個250ml燒瓶(一個裝一蒸水,一個裝新潔爾滅,另一為空的備用)1個500ml燒瓶(廢液缸)、溫度計、ph試紙(事先調ph值)、酒精燈、打火機/火柴、載玻片(5-10個)[用于培養前看接種密度及消化后看細胞密度]、注射器5ml 6個(胰,酶、dmem、胎牛血清)1ml 2個(雙抗液)20ml備用2個、微量加樣器1000ml及500ml
以上物品均用紫外線照30分鐘。
另外準備手套、帽子、口罩、24孔培養板、離心機+一把小鎖、未凍藥品及dmem、nahco3、胎牛血清。
事先把顯微鏡、離心機、磁力攪拌器電源插好。檢查酒精燈是否有酒精,碘酒和酒精棉球是否夠用。先把物品遞入,后穿大衣、帽子和口罩。然后把酒精燈打開,把瓶皿擺好,再用一個瓶皿裝酒精棉球。
培養過程:
1.把兩個5ml注射器分別插入dmem和胰,酶中,分別向兩個圓皿中加入5ml的dmem培養液。用一把大鑷子從鼠盆里取出一只生后2~3天的sd大鼠,放入0.1%新潔爾滅浸泡一下后拿出放在泡沫板上,用針頭把鼠固定(位置擺正),用另一把大鑷子取碘酒棉球擦皮膚,再用酒精棉球脫碘,取一把小剪子及小鑷子開皮,充分撕拉開,再用酒精棉球消毒,后換另一把小剪子和鑷子在劍突處正中線稍偏左開胸取心。
2.取出的心放在剛才準備的一個裝有dmem的圓皿中再取下一只。重復以上過程。(鼠全部殺死后,把取鼠鑷及泡沫板、新潔爾滅缸等拿**面。消毒、清潔,鋪紗布、換手套。
3.用第三副剪子和鑷子把圓皿中的心臟周邊的血凝及纖維組織剔除掉,放在另一個預先裝好dmem的圓皿中。抽取5ml的胰,酶,然后將其中少許放入50ml的小燒杯中,大部分倒入三角燒瓶中。用第四副剪子將燒杯中的心臟剪成1mm3的碎塊,倒入三角燒瓶中(可用剪刀刮入),再用剩余胰,酶刷凈燒杯。
4.把溫度計和三角燒杯放入250ml燒瓶中,(事先調好水量,多會沒過三角燒杯,少溫度會不均勻)。打開磁力攪拌器電源,調溫度(使-緩慢加到34~35℃)和轉速(轉速不可過快,否則會打碎細胞,基本上標志為平行)。一定要注意監控。
5.溫度達到34℃時開始計時,第,一次為10分鐘,以后可為8分鐘,事情況而定。在此期間,在試管架上擺上5、6個離心管,標上1、1,2、2。其中在1號兩管事先加入dmem液各2毫升
6.10分鐘后,把三角燒瓶取下,磁力攪拌器關上,用一個吸管輕輕吹打(使消化下來的細胞徹,底從組織團快上掉下來),這個吸管(1)用后固定放在一個離心管中,以后每次消化后取下都用其吹打幾下,第,一次上清棄去,然后向兩個1號管分別倒入2ml上清(盡量不要把組織倒出,也不要剩液太多,以免消化下的細胞重復消化造成損傷),用另一個吸管(2)混勻配平兩個管(即兩個管水平高度相同),輕輕吹打,以免損壞細胞。
7.接著把這兩個離心管放入離心機中,調10分鐘,800或1000轉,墊小鎖,打開關。
8.同時向三角燒瓶中加入5ml胰,酶,繼續消化8分鐘,注意控制溫度。此時向兩個2號管中分別加入2mldmem液。
9.取下三角燒瓶,仍用1號吸管吹打,后靜置片刻向兩個2號管分別倒入2毫升的上清,取出兩個離心后的1號管,把上清液沿細胞貼壁一方慢慢倒掉,后向其中一管加入4ml的dmem液,用2號吸管取少量液體加入另一個離心管中,把管底的沉淀細胞洗下來,把液體全部移入其中一管,三個管(1個1號管,兩個2號管)配平,放入離心管中,離心十分鐘。同時仍加5ml的胰,酶,放入三角燒瓶中,繼續消化(注意控制溫度,達34℃時計時)。
10.消化到4次左右,吹打均勻后,吸一滴滴在載玻片上,拿到鏡下觀察消化情況,決定消化次數。
11.離心2次的吸管,放在試管架上,待離心過程全部完事后,把各管上清液倒掉,在各管加上3ml(不用精確,大致這樣)dmem液,記住共加入多少dmem液的量,換吸管(3號)把各管底細胞塊吸下吹打均勻后,移入50ml燒杯中,然后用注射器抽取余量的dmem加入燒杯中,加入小牛血清及抗生素,換吸管(4號)吹打均勻。
12.取出24孔培養板,一個人吹打,另一個人用加樣器加藥。封蓋時過火,蓋上蓋,放在co2孵箱。24小時后觀察是否貼壁。
(24孔板,每孔最多加2ml,一般加液時每孔加1~1.5ml)
配藥:天平、量筒、燒杯、玻璃棒、二蒸水、硫酸紙。
ne:加樣器1000μl大頭一個或1ml注射器一個,50μl小頭一個。量筒100ml,燒杯100毫升。
配法:抽取0.85mlne液,放入燒杯,再加二蒸水99.15ml補足至100ml,備用。在工作臺內,用針頭濾器濾過(儀器:針頭濾器及膜,先試膜,再高壓消毒,注意壓力),在一個新的100ml燒杯內。取4個50ml的燒杯,分別標號1、2、3、4。然后用加樣器(100μl)分別取0.1mlne放入3、4杯內。
小牛血清:先配初液,即0.4ml/10ml(用低糖dmem配,0.4ml牛血清需500μl加樣器一個)。配成后即為4%的濃度。分別取0.1ml放入1、2、3、4號的50ml的燒杯內。
抗生素:分別取0.1ml放入1、2、3、4號的50ml的燒杯內。
分別向1、2、3、4號的50ml的燒杯內加入dmem。各為9.7ml、9.7ml、9.6ml、9.6ml。用4個吸管吹打均勻,然后用加樣器每組加1.0ml。另一人用吸管吸出培養液。每組換一個大頭。

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