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細胞傳代的時間老是掌握不好?這些經驗要知道!

養細胞的小伙伴們都知道,細胞一定要傳代,因為細胞在培養過程中不斷的繁殖,數量也隨之增加,然而培養皿/培養瓶的空間有限,增殖受到抑制,所以必須將一部分細胞移至別的培養皿/培養瓶,讓細胞有足夠生長空間。
細胞傳代也不僅僅是為細胞安一個更大的“家”,更重要的,是使細胞系或細胞株進一步增殖,這樣,我們才能有足夠的細胞做各種各樣的實驗。
但是,對于傳代的時間,很多小伙伴都掌握不好,因為對于不同的細胞來說,判斷能否開始傳代的標準略有不同,今天,我們就主要來聊一下,細胞傳代的時間問題。
什么時候進行細胞傳代?
對于貼壁培養和懸浮培養而言,判斷是否需要傳代主要看以下2個方面:
細胞密度:
貼壁培養細胞進入對數生長期、未達到匯合狀態時即應進行傳代,正常細胞達到匯合狀態時會停止生長(接觸抑制),重新接種后需要較長時間才能恢復,轉化細胞即使達到匯合狀態也能繼續增殖,但是在經過大約兩個倍增時間后通常會變質。類似地,
懸浮培養的細胞進入對數生長期、未達到匯合狀態時也應進行傳代。達到匯合狀態時,懸浮培養的細胞會聚集成團塊,轉動培養瓶時培養基會變得渾濁。
培養基耗竭:
生長培養基ph值降低通常表示乳酸蓄積,乳酸是細胞代謝的副產物。乳酸有細胞毒性,而且ph值降低也是細胞生長的不利因素。ph值改變的速度通常取決于培養體系中的細胞濃度,細胞濃度越高,培養基耗竭的速度越快。
如果發現ph值迅速降低(>0.1–0.2 ph單位),同時細胞濃度增大,則應對細胞進行傳代。
細胞傳代時間安排
注意,一定要嚴格按照預定時間進行細胞傳代,這樣才能確保細胞的生物學行為穩定,便于監測其健康狀態。
要從某一接種密度開始逐漸調整細胞接種密度,直到達到適合該細胞的穩定生長速度和產量,細胞偏離如此確定的生長模式通常表示細胞健康狀況不佳(例如:變質、污染)或者培養體系的某一組分功能異常(例如:未達到最,佳溫度,培養基過于陳舊)。
強烈建議大家保留詳細的細胞培養記錄,記錄加料和傳代時間、所用培養基種類、解離方法、分種率、形態學觀察結果、接種濃度、產量和抗生素用法。
最,好按照傳代時間安排開展實驗和其他非常規操作(如更換培養基種類),如果您的實驗安排與常規傳代時間安排不吻合,則應確保當細胞仍處于延滯期或者已經達到匯合狀態、停止生長時,不進行傳代。
貼壁細胞傳代流程:
以下實驗方案介紹了貼壁細胞和懸浮細胞傳代的一般流程,為自己所用的細胞系傳代時,建議您嚴格遵守實驗中所有產品附帶的操作說明,偏離某種細胞所需的培養條件會導致細胞表型異常,甚至培養完,全失敗。
(1)傳代前準備
用具紫外照射消毒(30min):無菌培養瓶,15ml離心管,移液管,移液槍,槍頭。
倒置顯微鏡下觀察細胞形態,確定細胞是否需要傳代及細胞需要稀釋的倍數。
(2)胰,蛋白酶/edta消化
從培養箱中取出待傳代的細胞(將蓋子擰緊),75%酒精進行瓶口消毒,吸掉培養細胞的舊培養基,pbs緩沖液洗去殘留的舊培養基,按25m2/ml消化液比例加入消化液,消化液中edta濃度視不同細胞而定。放入顯微鏡下觀察,待所有細胞變圓后立即拿入超凈臺內,加入6ml細胞完,全培養基中止消化,消化時間為1-5min,具體以細胞而議,采用無菌吸管輕輕吹打細胞表面,注意吹打全部培養表面,可以按照先左右吹打,后上下吹打的方式,取所有的細胞懸液放入干凈的15ml離心管內,每分鐘1000rpm,rt5min。
(3)制備細胞懸液及培養
吸取上清液丟棄,不要吸到底部的細胞沉淀,向離心管內的細胞沉淀加入適量完,全培養基,吹打混勻,吹打過程中盡量不要產生氣泡,以1:2的比例進行分瓶。
(4)結果觀察
第二天觀察細胞情況,細胞培養換液時間一般2-3天。
(5)注意事項
1嚴格無菌
2適度消化:把握好消化液的最,佳濃度
3吹打細胞動作要輕柔
懸浮細胞傳代流程
懸浮細胞傳代就比較容易了,可以直接將培養瓶中的液體吸掉,只留下少量,然后加入新鮮培養液即可。當細胞懸液中碎片或顆粒物較多,感覺到比較臟時,可以將懸液移到離心管內,1000-1500rpm離心3min,棄上清,加入約2ml培養液,吹打至均勻,滴加2-3滴至已加入新鮮培養液的培養瓶中,然后置于二氧化碳培養箱中培養。

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