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微生物取樣、樣品制備技巧及稀釋、接種、培養方法匯總

一、取樣準備
(1)取樣時該樣品必須是代表該批產品情況。
從車間取回樣品冷凍品按要求進行解凍,干燥食品可放在常溫冷暗處,易腐和冷卻樣品應放入10℃環境。冷凍樣品來不及檢驗應放入-15℃以下冰箱內,待檢樣品存放時間不應超過36h。
(2)解凍
原則上冷凍樣品取出后,按包裝原樣在室溫下自然解凍;也可在0-4℃環境解凍,時間不超過18小時;也可在溫度不超過45℃環境中解凍,時間不超過15min。如果這些解凍條件對有些產品尤其是大塊冷凍品達不到解凍的目的,可參照以下解凍時間。
① 100-300g調理食品45℃解凍10min左右;
② 500g以下冷凍蔬菜30℃解凍40min左右;
③ 500g以上冷凍樣品37℃解凍1h左右;室溫下解凍2h左右。
※ 備注:將樣品解凍到半解凍狀態(用剪刀能剪開的程度)。
(3)操作環境
試驗前用臭氧發生器/紫外線將工器具、無菌間滅菌消毒,達到無菌狀態。
操作試驗的準備物品均質袋、酒精及酒精棉、吸管、平皿、稀釋液、剪刀、鑷子、無菌盆等物品是否齊全。
二、取樣及樣液制備
1 樣品標識
將樣品從污染程度低到污染程度高的順序排列,相應的作一一對應性標識,其中按細菌數平皿、大腸菌群平皿、平皿的順序,2-3個樣品一摞。
2 檢樣采取
先將樣品外包裝正反面用酒精噴灑(如果樣品表面有冷凝水先擦拭干凈后再用酒精噴灑)
(1)固體樣品
① 75%酒精棉消毒開啟部位及其周圍,再用火焰滅菌的剪刀剪開
② 在電子稱上放入無菌均質袋(手不要碰及袋口)去皮調整至零,
③ 用火焰滅菌后的剪刀和鑷子取樣,稱取25g有代表性樣品
④ 加入225ml滅菌磷酸鹽緩沖液(開蓋瓶塞時瓶口部和瓶塞應在火焰通過1-2次,以殺滅從空氣中落入雜菌)后,均質或待均質
⑤擦拭干凈剪刀鑷子后浸泡于75%酒精容器中并將樣品封口。
⑥將袋子折疊后用拍擊式均質器均質約30秒作為樣液,此時均質袋內要設定為不含空氣(可根據樣品不同情況相應調整均質時間),
(2)液體樣品
①冷凍樣品解凍后使用。
②75%酒精棉消毒開啟部位及其周圍,再用火焰滅菌的剪刀開啟,用滅菌吸管取充分混合后樣25ml。
③余同上。
(3) 粉末狀樣品以及半固體樣品
①將樣品混合均一化。
②75%酒精棉消毒開啟部位及其周圍,再用火焰滅菌的剪刀開啟,以無菌匙采取混合后樣10g。
③加入90ml滅菌磷酸鹽緩沖液,開蓋瓶塞時瓶口部和瓶塞應在火焰通過1-2次,以殺滅從空氣中落入雜菌。
④余同上。
※備注:
(1) 從罐頭取樣時,在表面放上小塊酒精棉(倒上少量酒精)點火燃燒后開罐。罐頭起子用酒精棉擦拭火焰滅菌后使用。
(2) 75%酒精必須保證一周換3次,如果容器內有明顯的污物應立即更換。
(3) 火焰滅菌的剪刀、鑷子通過火焰4-5s即可。
三、稀釋方法
①從均質袋準確吸取樣液1ml,
②沿管壁徐徐接種到含9ml磷酸鹽緩沖液里,蓋上試管塞后充分震蕩混勻為1:100稀釋液。(勿使吸管伸入稀釋液內,以免吸管外部粘附的檢液溶于其內。)
③重復該操作,按需要配制1:1000、1:10000…稀釋液。
④為減少樣品稀釋誤差,在連續遞增稀釋時(原液在前稀釋液在后),每一稀釋液應充分振搖,使其均勻,同時每一稀釋度應更換一支吸管。
⑤不要在稀釋劑中吹洗吸管。
※備注:
(1) 樣液稀釋必須加以足夠震搖,確保液體混勻,形成的菌落能以10倍遞增或遞減,符合邏輯性。
(2) 車間產品根據加工工藝或對污染情況的估計選擇合適的稀釋倍。(尤其注意蔥、姜、蒜等無加熱類產品、保存實驗、外調新廠家、樣品開發、原料等樣品)。
四、樣液接種方法:
① 從吸管筒沿筒上壁抽出吸管,在火焰旁吹洗吸耳球同時在吸管尾端插上吸耳球后,從吸管尾端至快速通過火焰,并且排空吸管里殘留的水,
② 以吸管插入均質袋樣液內的深度不超過2.5cm處,準確吸取樣品勻液(吸管尖不要碰著袋口。吸入的液體應先高于所要求的刻度, 然后提起吸管使其離開液面并貼在袋內將液體調至所要求的刻度。)1ml、1ml、1ml、0.2ml無菌操作分別以2~4s內注入已標識清楚的細菌數、大腸菌群、ec以及平皿中(ec接種后應迅速震蕩均勻)
③ 如果某一樣品液在接種前放置時間超過3 min,應重新均質。
④為了驗證稀釋液、培養基、平皿、吸管等器具無菌需做空白對照。
五、傾注倒藥方法
右手持培養基三角瓶(已放50-60℃的水浴中恒溫)置火焰旁邊,用左手拇指和食指或中指使平皿開啟成一縫,迅速倒人培養基約15ml,加蓋后輕輕搖動培養皿,使培養基均勻分布在培養皿底部,然后平置于桌面上;也可將平皿放在火焰附近的桌面上用左手的拇指和食指打開培養皿,再注入培養基,搖勻
※備注:
(1)培養基在50-60℃水浴中的保溫時間不要超過4h。
(2)從采樣開始到分注培養基操作限于20min以內。
(3)涂布的平皿表面需干燥(干燥不充分易發生菌落擴散,有冷凝水不利于細菌分離并且會導致細菌繁殖使結果失真;干燥過分,會導致培養基裂開,不能用;干燥合適,則樣液吸收、快)。
(4)細菌容易吸附在玻璃器皿的表面,所以菌液注入平皿后應盡快將平皿內的樣液和瓊脂培養基充分混合,否則細菌不容易分散。混合方法是將平皿傾斜和旋轉使之充分混合,但要注意不要讓培養基從培養皿內溢出,且不要粘附在平皿壁和蓋上。
六、培養
●平皿倒置放入恒溫培養箱中(每垛最多堆放6個平皿,平皿間要留有空隙進行空氣流通,使培養物的溫度盡快與培養箱溫度達到一致),按所規定的時間溫度進行培養。培養箱應保持一定的濕度,經48h培養的瓊脂培養基的失重不得超過15%
●斜面、高層斜面、液體培養基立在試管架上放入恒溫培養箱中,按所規定的時間溫度進行培養
七、計數判定及注意事項
●由于細菌種類繁多,差別甚大。計數時一般用透射光于平皿背面或正面(菌落計數器)仔細觀察。必要時用放大鏡檢查,以防遺漏尤其是平皿邊緣生長的菌落。
●計數方法參照sn/t 0168-2015方法。
●稀釋度低的培養皿,微生物菌落和食品碎渣很難區分,一般以食品碎渣沒有光澤,不夠光滑來識別。
●為了避免食品中的微小顆粒或培基中的雜質與細菌菌落發生混淆,不易分辨,可同時作一稀釋液與瓊脂培基混合的平板,不經培養,而于4℃環境中放置,以便計數時作對照觀察。
●必要時,為了防止食品顆粒與菌落混淆不清,可在平板計數瓊脂中加入氯化三苯四氮唑ttc(100ml加入1ml 0.5%ttc),培養后菌落呈紅色,易于分別。
●在發酵試驗中,發酵倒管的產氣量,多者可以使發酵倒管全部充滿氣體,少者可以產生比小米粒還小的氣泡,或發酵時產酸或沿管壁有緩緩上浮的小氣泡,都應作進一步試驗。如果對產酸但未產氣的發酵有疑問時,可以用手輕輕打動試管,如有氣泡沿管壁上浮,就像啤酒中的二氧化碳氣泡一樣,即應考慮可能有氣體產生,而應作進一步試驗。如果只是搖起的氣泡,就是陰性。
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